合作客戶/
拜耳公司 |
同濟大學 |
聯合大學 |
美國保潔 |
美國強生 |
瑞士羅氏 |
相關新聞Info
推薦新聞Info
-
> 十二胺功能化石墨烯量子點的制備、表面張力及對L-薄荷醇的緩釋作用（三）
> 十二胺功能化石墨烯量子點的制備、表面張力及對L-薄荷醇的緩釋作用（二）
> 十二胺功能化石墨烯量子點的制備、表面張力及對L-薄荷醇的緩釋作用（一）
> 超微量天平比普通電子天平“好”在哪？
> 界面張力儀評估氨基化氧化石墨烯-脂肪酸共吸附機制、應用潛力（四）
> 界面張力儀評估氨基化氧化石墨烯-脂肪酸共吸附機制、應用潛力（三）
> 界面張力儀評估氨基化氧化石墨烯-脂肪酸共吸附機制、應用潛力（二）
> 界面張力儀評估氨基化氧化石墨烯-脂肪酸共吸附機制、應用潛力（一）
> LB膜分析儀證明SP-B在肺表面活性物質三維結構形成中的關鍵作用
> 新型多功能解堵體系-單相酸體系乳化、界面張力測定及現場應用效果（二）
微尺度區域內靜電相互作用力動態調節和脂質雙分子層的分布——結論、致謝！
來源：上海謂載 瀏覽 1765 次 發布時間:2021-10-28
四、總結與結論
在這項研究中，我們使用不同的中性和帶電方法測量了域間相互作用對微米級平面脂質雙層特性的影響。 域。 一方面，我們確定了動態參數，例如域的擴散和域的速率 合并。 第一個實驗表明，當該區域 液相有序相所占的比例高，域 由于域間排斥，運動被排除， 并且當域被觀察到更顯著的效果 帶電。 關于域合并，我們已經證明 對于中性膜，結構域以緩慢的速度融合，當 它們被充電，增強的相互作用阻止它們在測量時間范圍內合并。 在 另一方面，我們進行了靜態測量，使我們能夠研究 雙層平面中域的結構，并估計它們之間的平均場相互作用常數。 我們發現 對于中性，域在 22%Lo 處形成有序晶格 薄膜和平均帶電薄膜的 18%Lo。 均值 場勢，它考慮了之間的相互作用 域，與帶電域相比更強 中性的，它們隨著 %Lo 增加的趨勢與 域擴散系數所遵循的行為。
在雙層中進行的所有實驗也在相同脂質成分的單層中進行，并使用 相同離子強度的溶液，結果發現 雙層結構與單層結構非常相似。 這是一個重要的結果，因為在單層中，靜電 已經在很大程度上描述了排斥，它們的影響是 被科學界廣泛接受。14、26、28、29、53、55、61、62 因此，域行為的相似性 雙層表明不可忽略的靜電相互作用 微米范圍，因此不完全篩選 水環境。 此外，域間排斥 此處描述的存在用于耦合域，表明 我們系統中的偶極密度沒有被取消，而是 占上風，與建議在對稱中發生的相反 Travesset 等人報告的域 63 反過來，我們的結果指出 平面內域間的重要貢獻 膜內的排斥力。 域間排斥 也可能存在非靜電起源（即曲率或 高度不匹配）但預計它們之間是相似的 帶電系統和中性系統。 因此，差異 預計這些系統之間的發現主要是由于 靜電相互作用。
總之，遠非可以忽略不計，我們證明了 雙層中的域-域靜電排斥出現 不僅要在場，還要在 擴散運動、界面結構和域的合并。 這些力，很可能發生在膜平面內， 在微米范圍的長度尺度上似乎很重要，并且 在生理條件下。 因此，插入細胞膜的物種之間的靜電相互作用可能 考慮到一種調節膜特性的方式，和 用于膜內分子的通訊。 在 除了生物膜，重要的是要注意的是 這些結果可能與其他類型的薄膜相關 偶極或帶電物質的介觀結構。
致謝
這項工作得到了 SECyT-UNC、CONICET 和 FONCYT（項目投標 0770），阿根廷。 西北是職業 研究員和 AM 是 CONICET 的博士研究員。 作者 感謝 Bruno Maggio 博士的修訂和幫助 手稿和 Jose′ Ignacio Gallea 的討論 內容圖稿設計表。
參考
1 P. Mueller, D. O. Rudin, H. T. Tien and W. C. Wescott, Circulation, 1962, 26, 1167–1171.
2 A. D. Bangham, B. A. Pethica and G. V. Seaman, Biochem. J., 1958, 69, 12–19.
3 Y.-H. M. Chan and S. G. Boxer, Curr. Opin. Chem. Biol., 2007, 11, 581–587.
4 D. Lingwood and K. Simons, Science, 2009, 327, 46–50.
5 I. Mellman and W. J. Nelson, Nat. Rev. Mol. Cell Biol., 2008, 9, 833–845.
6 M. Sto¨ckl, J. Nikolaus and A. Herrmann, in Liposomes: Methods and Protocols, Biological Membrane Models, ed. V. Weissig, Humana Press, Totowa, NJ, 2010, vol. 2, pp. 115–126.
7 M. F. Hanzal-Bayer and J. F. Hancock, FEBS Lett., 2007, 581, 2098–2104.
8 C. Dart, J. Physiol., 2010, 588, 3169–3178.
9 K. Simons and D. Toomre, Nat. Rev. Mol. Cell Biol., 2000, 1, 31–39.
10 A. F. G. Quest, J. L. Gutierrez-Pajares and V. A. Torres, J. Cell. Mol. Med., 2008, 12, 1130–1150.
11 H. M. McConnell, L. K. Tamm and R. M. Weis, Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A., 1984, 81, 3249–3253.
12 F. Vega Mercado, B. Maggio and N. Wilke, Chem. Phys. Lipids, 2012, 165, 232–237.
13 M. Karttunen, M. P. Haataja, M. Saily, I. Vattulainen and J. M. Holopainen, Langmuir, 2009, 25, 4595–4600.
14 S. Ha¨rtel, M. L. Fanani and B. Maggio, Biophys. J., 2005, 88, 287–304.
15 A. J. Garc?′a-Sa′ez, S. Chiantia and P. Schwille, J. Biol. Chem., 2007, 282, 33537–33544.
16 F. A. Heberle, R. S. Petruzielo, J. Pan, P. Drazba, N. Kucˇerka, R. F. Standaert, G. W. Feigenson and J. Katsaras, J. Am. Chem. Soc., 2013, 135, 6853–6859.
17 J. M. Holopainen, H. L. Brockman, R. E. Brown and P. K. Kinnunen, Biophys. J., 2001, 80, 765–775.
18 F. V. Mercado, B. Maggio and N. Wilke, Chem. Phys. Lipids, 2011, 164, 386–392.
19 A. Aroti, E. Leontidis, E. Maltseva and G. Brezesinski, J. Phys. Chem. B, 2004, 108, 15238–15245.
20 M. L. Longo and C. D. Blanchette, Biochim. Biophys. Acta, Biomembr., 2010, 1798, 1357–1367.
21 A. E. McKiernan, T. V Ratto and M. L. Longo, Biophys. J., 2000, 79, 2605–2615.
22 U. Bernchou, J. Brewer, H. S. Midtiby, J. H. Ipsen, L. A. Bagatolli and A. C. Simonsen, J. Am. Chem. Soc., 2009, 131, 14130–14131.
23 M. L. Fanani, L. De Tullio, S. Hartel, J. Jara and B. Maggio, Biophys. J., 2009, 96, 67–76.
24 A. A. Bischof, A. Mangiarotti and N. Wilke, Soft Matter, 2015, 2147–2156.
25 P. Kru¨ger and M. Lo¨sche, Phys. Rev. E: Stat. Phys., Plasmas, Fluids, Relat. Interdiscip. Top., 2000, 62, 7031–7043.
26 H. McConnell, Annu. Rev. Phys. Chem., 1991, 42, 171–195.
27 T. M. Fischer and M. Losche, Lect. Notes Phys., 2004, 634, 383–394.
28 M. Seul and D. Andelman, Science, 1995, 267, 476–483.
29 D. Andelman, MRS Proc., 1989, 177, 337–344.
30 J. Liu, S. Qi, J. T. Groves and A. K. Chakraborty, J. Phys. Chem. B, 2005, 109, 19960–19969.
31 T. M. Konyakhina, S. L. Goh, J. Amazon, F. A. Heberle, J. Wu and G. W. Feigenson, Biophys. J., 2011, 101, L8–L10.
32 J. J. Amazon, S. L. Goh and G. W. Feigenson, Phys. Rev. E: Stat., Nonlinear, Soft Matter Phys., 2013, 87, 1–10.
33 H. M. McConnell and A. Radhakrishnan, Biochim. Biophys. Acta, Biomembr., 2003, 1610, 159–173.
34 S. Rozovsky, Y. Kaizuka and J. T. Groves, J. Am. Chem. Soc., 2005, 127, 36–37.
35 J. T. Groves, Annu. Rev. Phys. Chem., 2007, 58, 697–717.
36 S. Semrau, T. Idema, T. Schmidt and C. Storm, Biophys. J., 2009, 96, 4906–4915.
37 T. S. Ursell, W. S. Klug and R. Phillips, Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A., 2009, 106, 13301–13306.
38 M. Montal and P. Mueller, Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A., 1972, 69, 3561–3566.
39 C. W. Harland, M. J. Bradley and R. Parthasarathy, Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A., 2010, 107, 19146–19150.
40 A. V. Samsonov, I. Mihalyov and F. S. Cohen, Biophys. J., 2001, 81, 1486–1500.
41 B. L. Stottrup, D. S. Stevens and S. L. Keller, Biophys. J., 2005, 88, 269–276.
42 S. L. Veatch and S. L. Keller, Phys. Rev. Lett., 2002, 89, 268101.
43 F. Tokumasu, A. J. Jin, G. W. Feigenson and J. a. Dvorak, Ultramicroscopy, 2003, 97, 217–227.
44 G. W. Feigenson, Biochim. Biophys. Acta, Biomembr., 2009, 1788, 47–52.
45 A. Mangiarotti, B. Caruso and N. Wilke, Biochim. Biophys. Acta, Biomembr., 2014, 1838, 1823–1831.
46 S. H. White, D. C. Petersen, S. Simon and M. Yafuso, Biophys. J., 1976, 16, 481–489.
47 A. Beerlink, S. Thutupalli, M. Mell, M. Bartels, P. Cloetens, S. Herminghaus and T. Salditt, Soft Matter, 2012, 8, 4595.
48 W. D. Niles, R. a Levis and F. S. Cohen, Biophys. J., 1988, 53, 327–335.
49 S. May, Soft Matter, 2009, 5, 3148.
50 N. Wilke and B. Maggio, J. Phys. Chem. B, 2009, 113, 12844–12851.
51 I. F. Sbalzarini and P. Koumoutsakos, J. Struct. Biol., 2005, 151, 182–195.
52 L. Belloni, J. Phys.: Condens. Matter, 2000, 12, R549–R587.
53 B. Caruso, M. Villarreal, L. Reinaudi and N. Wilke, J. Phys. Chem. B, 2014, 118, 519–529.
54 B. D. Hughes, B. A. Pailthorpe and L. R. White, J. Fluid Mech., 1981, 110, 349–372.
55 E. Rufeil-Fiori, N. Wilke and A. J. Banchio, Soft Matter, 2016, 12, 4769–4777.
56 N. Wilke, F. Vega Mercado and B. Maggio, Langmuir, 2010, 26, 11050–11059.
57 S. Ha¨rtel, M. L. Fanani and B. Maggio, Biophys. J., 2005, 88, 287–304.
58 V. A. J. Frolov, Y. A. Chizmadzhev, F. S. Cohen and J. Zimmerberg, Biophys. J., 2006, 91, 189–205.
59 P. I. Kuzmin, S. A. Akimov, Y. A. Chizmadzhev, J. Zimmerberg and F. S. Cohen, Biophys. J., 2005, 88, 1120–1133.
60 S. Keller and H. McConnell, Phys. Rev. Lett., 1999, 82, 1602–1605.
61 N. Wilke and B. Maggio, Biophys. Rev., 2011, 3, 185–192.
62 D. Andelman, F. Bro?hard and J. Joanny, J. Chem. Phys., 1987, 86, 3673–3681.
63 A. Travesset, J. Chem. Phys., 2006, 125, 0–12.
微尺度區域內靜電相互作用力動態調節和脂質雙分子層的分布——摘要、簡介
微尺度區域內靜電相互作用力動態調節和脂質雙分子層的分布——實驗材料和方法